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免疫印跡法(WB)抗體純化的原理、步驟與注意事項(xiàng)

 發(fā)布時(shí)間:2023/7/12 點(diǎn)擊量:1945

原理

免疫印跡法(Western Blot,WB)是一種通過識(shí)別蛋白質(zhì)的特定抗原性進(jìn)行檢測(cè)和分析的方法,可用于抗體純化。在免疫印跡法中,通過利用蛋白質(zhì)的親和性和特異性,將抗血清中的待純化抗體與其所特異結(jié)合的抗原分離出來。

用途

降低非特異性本底。

材料與儀器

免疫抗原、抗血清、PVDF 膜、電泳膠

電泳液、轉(zhuǎn)膜液、預(yù)染蛋白 Marker

5% 脫脂牛奶、PBST、電泳儀、電轉(zhuǎn)槽、搖床

步驟

利用 western blot 進(jìn)行抗體純化的步驟如下:


1、上樣蛋白準(zhǔn)備。將免疫抗原作為上樣蛋白進(jìn)行備樣,設(shè)置 3 個(gè)不同濃度的上樣量(2 ug4 ug、6 ug),以便后續(xù)可通過不同量的蛋白泳道孵育出的深淺不同驗(yàn)證抗體特異性。

2、點(diǎn)樣及電泳。根據(jù)免疫抗原的分子量大小配置適合的電泳膠(8%15%),以能明確看到免疫抗原位置為準(zhǔn),進(jìn)行電泳。120 V 恒壓,90120 min 至藍(lán)色指示帶跑到接近膠板下緣。

3、轉(zhuǎn)膜。先把膠用劃刀裁至合適大小,再根據(jù)膠大小裁剪合適的 PVDF 膜,手不要接觸轉(zhuǎn)膜紙,將毛氈墊、吸水棉分放在夾板兩邊,將膠放在黑色夾板上面,上面覆上 PVDF 膜,趕盡氣泡,夾緊后放入轉(zhuǎn)膜盒。將整個(gè)轉(zhuǎn)膜設(shè)備放入預(yù)先備好的冰塊的盆中。設(shè)置條件:350 mA 恒流 90 min

4、封閉。轉(zhuǎn)膜結(jié)束后,將 PVDF 膜取出放在 5% 脫脂牛奶中封閉 1 小時(shí)。用 PBST 漂洗 3 次,每次 5 min。

5、孵育一抗。這里用抗血清作為一抗進(jìn)行孵育,建議進(jìn)行 1:100 稀釋后使用, PVDF 膜浸潤(rùn),搖床 4 ℃ 過夜。第二天 PBST 漂洗 3 次。

6、孵育二抗。加入 1:3000 稀釋的 HRP 標(biāo)記的羊抗兔 IgG 二抗將 PVDF 膜充分浸潤(rùn),室溫孵育 1 小時(shí),漂洗 3 次。

7、顯影。將顯影液按比例預(yù)先混合好,PVDF 膜平鋪在塑料膜上,蛋白面朝上,將混合好的顯影液均勻地滴在上面。利用 Image Quant LAS 4000 mini 顯影儀顯影。此時(shí)如有蛋白條帶在免疫抗原位置顯示出來,并根據(jù)蛋白量的不同有深淺之分,則說明抗血清中抗體滴度高,特異性強(qiáng)。

注意事項(xiàng)

1, 若免疫抗原是自己提純的蛋白,則要保證蛋白的純度,盡可能提高蛋白的純度。

2, 提前搜索目的蛋白的分子量大小,根據(jù)分子量大小選擇電泳膠的濃度??梢詤⒖?marker 說明書,最好讓蛋白跑在膠中間的位置。

3, 轉(zhuǎn)膜的時(shí)候注意膠和膜的上下關(guān)系,不要轉(zhuǎn)反,如果轉(zhuǎn)反了,即便抗體是好用的,實(shí)驗(yàn)結(jié)果也是陰性的。

常見問題

1. 免疫抗原一般為人工合成的蛋白,本方法只能說明免疫動(dòng)物后產(chǎn)生了抗免疫抗原的抗體,并不能說明產(chǎn)生了抗天然蛋白的抗體,如需驗(yàn)證所產(chǎn)生抗體是否可與天然蛋白結(jié)合,需將上樣液中的免疫抗原更換為天然抗原,純度不高沒有關(guān)系,有一定量即可。

2. 抗血清的稀釋是為了保證所產(chǎn)生的待測(cè)抗體滴度足夠高,從而便于后續(xù)純化收集,如只想驗(yàn)證有無,也可以用抗血清原液進(jìn)行孵育。

3. 如此方法中免疫抗原與抗血清無法結(jié)合,可利用 ELISA 進(jìn)行檢測(cè),因?yàn)?WB 中的蛋白為線性蛋白,空間結(jié)構(gòu)與天然有所差別,會(huì)有影響。

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